關鍵詞:神經(jīng)元細胞培養(yǎng)|實驗技術服務
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神經(jīng)元細胞培養(yǎng)|實驗技術服務——pCzn1質粒+Arctic Express宿主菌低溫表達體系。
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測序實驗流程：
實驗方法原理 SD胎鼠腦皮層神經(jīng)元體外培養(yǎng)7 d，微量移液器塑料滴頭于培養(yǎng)孔內(nèi)機械性劃割培養(yǎng)之神經(jīng)元，依劃割程度不同分為輕、中、重3組，對照組除不進行機械性劃割，其余處理同損傷組，傷后不同時間點（10，30min ， 1，3，6，12，24 h）檢測細胞存活率及培養(yǎng)液上清乳酸脫氫酶(LDH)含量。
實驗材料 SD大鼠
試劑、試劑盒 硼酸硼砂緩沖液胰酶-EDTA 消化液D-Hanks’
儀器、耗材 眼科剪滴管離心機培養(yǎng)皿 CO2培養(yǎng)箱
實驗步驟
1. 孕16 d SD 大鼠經(jīng)****鈉麻醉后，碘酒、75%乙醇消毒腹部皮膚，依次剪開皮膚、肌肉、皮下筋膜，無菌操作下取出胚胎放入預冷的 D-Hanks’平衡鹽液中。
2. 在解剖顯微鏡下分離并取出胚胎大腦皮層，除去腦膜，剪碎組織成約1mm3 大小，加入胰酶-EDTA 消化液并放入 37℃孵箱內(nèi)消化20 min，中間搖晃一次。
3. 隨后用滴管吸出組織轉移到裝有預冷的培養(yǎng)液(DMEM＋10%FBS)的離心管內(nèi)終止消化液作用5 min。
4. 用滴管吸出組織轉移到裝有預冷的 DMEM＋10%FBS 的離心管內(nèi)，用火焰拋光的巴斯德滴管吹打數(shù)次，靜置后取上清吸到另一支離心管內(nèi)。重復上述步驟 2～3 次。
5. 將所收集的上清經(jīng)200 目篩網(wǎng)過濾。
6. 過濾后的細胞懸液于800 rpm 離心5 min，棄上清，管內(nèi)加入新鮮培養(yǎng)液(DMEM＋20%FBS)并吹打 成單細胞懸液。
7. 細胞計數(shù)，調(diào)整細胞密度按1.5×105/cm2  種入6 孔板內(nèi)，放入CO2 孵箱中培養(yǎng)。培養(yǎng)48 h 后換液并 加入Ara-C使其終濃度為 1×10-5 mM/L。Ara-C作用24 h 后全量換液。以后每隔 3 天半量換液一次。