一、配制時的質量控制 

   （ 1 ）容器：配制和分裝培養(yǎng)基的燒瓶、平皿或試管等器材應為中性，無酸、堿抑制物殘留，平皿底部要平，以免瓊脂厚薄不一，影響藥敏試驗結果。 

   （ 2 ）成分來源：各種成分來源可靠，不含對目的菌生長有抑制的物質。特殊要求的培養(yǎng)基，如葡萄糖氧化發(fā)酵試驗（ O ／ F 試驗），除加入葡萄糖外，不能含有其他糖類，指示劑不能用乙醇溶液，避免 O ／ F 試驗的假陽性。培養(yǎng)基配制用水應是蒸餾水。 

   （ 3 ） pH 值調整：根據培養(yǎng)基的不同要求調整 pH 值，控制在要求范圍的± 0.2 之內。應當注意，培養(yǎng)基在高壓滅菌后其 pH 值降低 0.1 ～ 0.2 ，故矯正時應比實際需要 p H 值高 0.1 ～ 0.2 。 

   （ 4 ）滅菌：根據培養(yǎng)基所含成分及配制數量的不同，選擇不同的滅菌方式，既要達到滅菌效果，又不破壞培養(yǎng)基成分。一般對穩(wěn)定的培養(yǎng)基，如 MH 瓊脂、營養(yǎng)瓊脂可用高壓滅菌，即 121 ℃ 15min ；而含糖的培養(yǎng)基則以 108 ℃ 滅菌為好，以防止糖類破壞。不耐高熱的物質如血清、牛乳等，可采用間隙滅菌法滅菌。 

   （ 5 ）分裝：根據使用的目的和要求決定分裝量。分裝培養(yǎng)基所用的平皿、試管要求清潔，不殘留酸堿；制備平板培養(yǎng)基時，操作臺要水平，以避免瓊脂平板厚薄不一，同時確保無菌操作。 

二、配制后質量控制 

   （ 1 ）培養(yǎng)基外觀情況：包括顏色、透明度、有無沉淀和凝固。如發(fā)現培養(yǎng)基表面有裂紋或與培養(yǎng)皿的邊緣分離，說明培養(yǎng)基有脫水現象，必須丟棄。 

   （ 2 ）無菌試驗：每一批配好的培養(yǎng)基均須進行無菌試驗。先滅菌后分裝的培養(yǎng)基，可采用抽樣方法試驗，少于 100 個樣本通常選取 5 ％～ 10 ％的量，如果配制大量培養(yǎng)基，則任意選取 10 個培養(yǎng)基；無菌分裝培養(yǎng)基則需全部做無菌試驗。樣本在 35 ℃ 或其他適宜的溫度下隔夜培養(yǎng)，如培養(yǎng)基含有血液，則需再置于室溫 1 天，以檢查嗜冷菌。選擇性培養(yǎng)基因含有抑制物質，能抑制許多微生物，因此，可加入 10 倍量的無菌液體培養(yǎng)基，稀釋抑制物質，以利于檢出污染菌。即使做過無菌試驗，接種時，也要檢查每個平板上的可見菌落。 

   （ 3 ）性能測試：每一批新制或新購的培養(yǎng)基，使用前均須取已知性質的庫存菌種進行性能測試。培養(yǎng)基按目的不同可分為增菌培養(yǎng)基、分離培養(yǎng)基和鑒定培養(yǎng)基。 

  ①增菌培養(yǎng)基：接種少量難以生長的細菌，在一定時間內觀察增菌情況，細菌能生長的*小接種濃度越小，說明增菌培養(yǎng)基性能愈好。 

  ②分離培養(yǎng)基：要求目的菌生長良好，非目的菌被抑制。一般要求生長的目的菌接種量不可過多，較好的方法是將測試菌調成 0 ． 5 麥氏濁度的菌懸液，再用 0.001ml 的標準接種環(huán)涂劃在培養(yǎng)基上，觀察菌落生長。 

  ③鑒定培養(yǎng)基：應選擇具有典型特征的菌株作性能試驗。如三糖鐵瓊脂，須用弗勞地枸櫞酸桿菌、福氏志賀菌及銅綠假單胞菌 3 種菌分別接種 3 支培養(yǎng)基，若反應結果為斜面產酸／高層產酸、硫化氫陽性，斜面產堿／高層產酸，斜面產堿／高層產堿，質量才算合格。